Este blog está asociado a las páginas web de las asignaturas de Microbiología del Grado de Biotecnología y del Grado de Ciencias Ambientales de la UMH.





Inicialmente era usado para publicar los resúmenes divulgativos de los trabajos presentados en clase, pero ahora se va a usar la cuenta de twitter para eso. Así que este blog va a permanecer como un espacio para la reflexión sobre el funcionamiento de la asignatura.


También podrás encontrar diversas páginas y blogs relacionados con el mundo de la Microbiología. El material que se presenta en ellos puede ser utilizado en clase.


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domingo, 22 de mayo de 2016

“Aislamiento de bacterias formadoras de ácido propanoico, butírico y acético en plantas de biogás”

Katharina Gabriela Cibis ∗, Armin Gneipel, Helmut König


En las plantas de biogás, a partir de compuestos simples podemos obtener metano, un gas inflamable con el que obtenemos energía de su combustión. Este proceso lo llevan a cabo bacterias en cuatro etapas en las cuales actúan grupos bacterianos diferentes:


  • Hidrólisis. (Bacterias Hidrolíticas)
  • Acidogénesis. (Bacterias acidogénicas)
  • Acetogénesis. (Bacterias acetogénicas)
  • Metanogénesis. (Arqueas metanogénicas)


Gracias a este hecho, muchas industrias han utilizado a estas bacterias para la obtención de metano a partir de desechos orgánicos, como ocurren en plantas de tratamiento de aguas residuales, obteniendo así energía para su autoabastecimiento.


El proceso se realiza en varias etapas, aunque la etapa más importante es la producción del metano en biorreactores anaeróbicos (ausencia de oxígeno) ya que estas bacterias son incapaces de vivir en medios oxigenados. Además, debemos tener en cuenta que las condiciones en estos biorreactores deben estar bien controladas, pues una pequeña perturbación, por ejemplo el pH, puede producir una disminución del rendimiento de la producción de metano.


Tras la obtención del metano en los biorreactores se produce su combustión, y el calor desprendido es el utilizado para generar energía en el cogenerador. Una parte de esta energía pasa al suministro público y otra pequeña parte para el autoabastecimiento de la planta.


Proceso general de obtención de energía por combustión de biogás. Fuente.
Procedimiento.


En este estudio se obtuvieron muestras de tres plantas de biogás alemanas mesófilas (temperatura óptima de crecimiento microbiano está entre 15-35ºC), una planta termofílica, y dos biorreactores mesófilos de biogás.


El objetivo era aislar las bacterias productoras de ácido. Los cultivos enriquecidos mesófilos y termófilos fueron incubados a 39 y a 54 ºC respectivamente. Se procedió al análisis e identificación de las bacterias presentes.


Después de la investigación de seis colonias, estas fueron sometidas a diferentes tests fisiológicos.


Resultados.


Tras la obtención de los análisis encontramos diferencias en las poblaciones microbianas que aparecían en las distintas plantas de biogás, esto es debido a las diferentes condiciones de trabajo (temperatura, presión, etc.), que son los factores determinantes que impiden el crecimiento de determinadas poblaciones sensibles a la temperatura o a altas presiones.  


El resultado de la asimilación de sustratos de las diferentes colonias cultivadas a diferentes temperaturas nos revela información acerca de las comunidades bacterianas que existen y nos permite clasificarlas en los siguientes grupos:


1.- Uso de carbohidratos y fermentación de productos primarios.
2.- Uso de carbohidratos.
3.-Uso de oligosacáridos y monosacáridos así como productos primarios de la fermentación.
4.- Uso de aminoácidos.
5.- Uso de ácidos y H2/CO2.


Conclusión.


Estas investigaciones dilucidaron nuevos descubrimientos en la degradación anaerobia microbiana de biomasa en plantas de biogás. La caracterización fisiológica reveló la habilidad de las colonias de formar acetato, propionato y butirato por conversiones de polímeros y metabolitos durante la degradación anaeróbica microbiana.


Componentes del grupo:


Adrián Tejero Pérez
Dilyan Timurov Glozhenski
Luis Chimeno Moral
Juan José Esteve Moreno
Pilar María Granado García

Bibliografía:


Cibis KG, Gneipel A, König H.
“Isolation of acetic, propionic and butyric acid-forming bacteria from biogas plants”
Institute of Microbiology and Wine Research (IMW), Johannes Gutenberg-Universität of Mainz, Johann-Joachim-Becherweg 15, 55128 Mainz, Germany.
 2016 Feb 20;220:51-63. doi: 10.1016/j.jbiotec.2016.01.008. Epub 2016 Jan 15.

miércoles, 21 de mayo de 2014

Producción rentable de celulosa bacteriana en cultivos estáticos utilizando el liquido residual de la destilación


La celulosa es un producto de uso cotidiano, por lo que hay una gran demanda comercial. Esto ha llevado al intento de mejora de la producción para que sea más eficiente y más rentable.
Existen principalmente 2 formas de producir celulosa:
·           A partir de los árboles: la celulosa obtenida requiere un tratamiento adicional para retirar la lignina. Este es un material que confiere resistencia a los árboles y, por tanto, difícil de eliminar, por lo que es muy costoso.
·            A partir de bacterias como Gluconacetobacter xylinum: usa la celulosa para mantenerse a flote en un medio acuoso que contiene los nutrientes y poder a la vez tener acceso al oxígeno del aire.
Tradicionalmente el medio en el que se produce Celulosa Bacteriana (BC) está formado por HS (Hestrin and Schramm), que tiene un alto contenido en azúcares usados por la bacteria tanto para crecer como para producir la celulosa, polímero de glucosa. Sin embargo, este método es bastante caro, por lo que se han estudiado alternativas.
Una de estas alternativas es el uso del líquido residual de la destilación del vino de arroz llamado TS (Thin stillage). Este residuo es muy contaminante, por lo que supone un coste para la empresa deshacerse de él. Por ello, cederlo para la producción de celulosa, además de abaratar los costes de producción de BC, evita el gasto económico para la destilería al procesarlo.
Se ha estudiado la influencia de la composición de los medios de cultivo en el tiempo de producción de BC,  sus características estructurales y la rentabilidad de la producción.

MEDIOS DE CULTIVO
Se usaron medios con diferentes proporciones de HS y de TS.
Como se muestra en la figura, la concentración de células y de BC aumenta conforme se incrementa la cantidad de TS. Pero, al  aumentar más de un 50% la proporción de TS, se observa un descenso notable en estos factores.

Esto indica que la máxima producción de BC solo se obtiene en un medio en el que haya un 50% de TS y otro 50% de HS (50/50 HS/TS).
Para comprender esto es necesario saber cómo se comporta la bacteria en cada medio. En medio formado exclusivamente por HS, el aporte mayoritario,  la glucosa, es usada tanto para el crecimiento celular como para  la producción de celulosa. Por otra parte, en medio formado exclusivamente por TS es necesario generar glucosa a partir de los ácidos orgánicos (aporte mayoritario de este medio)  para sintetizar celulosa. Y en medio mixto los ácidos orgánicos del TS se usan para el crecimiento y la glucosa del HS para celulosa.

TIEMPO DE PRODUCCIÓN DE BC
Los medio usados en este caso son: 100% HS, 50%HS (50% agua y 50% HS), 50/50 HS/TS, 100%TS y 50% TS (50% agua y 50% TS).
 En los medios con HS la concentración de glucosa se reduce hasta un nivel muy bajo durante los 3 primeros días debido a que la célula la incorpora y lo transforma en energía.
Por el contrario en los medios con TS, la concentración de glucosa se mantiene prácticamente constante dado que lo que usa la bacteria en este caso son los ácidos orgánicos del medio.
También se observa en esta gráfica que, en el medio 50-50, la masa de células, junto con la producción de BC, a los 7 días es mayor que en el resto de medios.


CARACTERÍSTICAS ESTRUCTURALES DE LA CELULOSA BACTERIANA
También se estudió el efecto del TS sobre las características estructurales de la Celulosa Bacteriana (BC) producida.
Películas de BC en bruto (no tratados)
La celulosa producida con el medio de TS  tiene un color más oscuro que la celulosa producida con los medios HS. Además la capa de celulosa con el medio 50/50 es de mayor grosor que el resto, como ya se ha comentado, por la mayor concentración celular y producción de celulosa.
Películas de BC tratadas con NaOH
Tras tratar la película de celulosa con NaOH, lo cual elimina las bacterias se obtuvieron películas blancas de Bc, de lo que se deduce que el color era debido a la presencia de los microorganismos. A mayor número de microorganismos, el color es más oscuro en los no tratados con NaOH.
También se observó que no hay diferencia en la estructura reticular ni en el tamaño de las fibrillas de celulosa entre los distintos medios. La celulosa obtenida con los medios que contienen TS es más densa en fibrillas, por lo tanto, tiene una menor capacidad de absorción: al ocupar más espacio las fibrillas hay menos espacio para los compuestos absorbidos.

RENTABILIDAD DE LA PRODUCCIÓN DE BC
 El abaratamiento de la producción de BC está basado en el uso de TS para reemplazar una parte del medio de HS. El coste de materias primas se reduce a la mitad debido a que el TS del TS-HS 50% es gratis. Además,  para producir la misma cantidad de BC en un medio mixto (TS-HS) que en un medio puro HS, la producción se abarata en un 67% (TS-HS). Si se usa un medio 100% TS, aunque sea gratuito, la producción de celulosa es la mitad que la del medio TS-HS 50%, por lo que el medio 50/50 es la mejor elección.


ENGLISH ABSTRACT
Bacterial Cellulose (BC) is traditionally produced in Hestrin and Schramm (HS) culture mediums using A. xylinum, but it is an expensive method. Researches Jyh-Ming Wu and Ren-Han Liu have conducted a study where Thin Stillage (TS) from rice wine destillation was used as a culture medium, totally or partially substituting HS medium, in order to improve the profitability of BC production and to solve the enviromental problem of TS (it is a pollutant). Several experiments concluded that 50/50 HS-TS medium was the most profitable medium and that it retained the structural characteristics of the BC produced in HS medium.

Artículo tratado:
Autores:  Jyh-Ming Wu y Ren Han-Liu
Publicado en: Journal of Biosciencie and Bioengineering, VOL 115 No. 3,284-290, 2013

Producción de ácido propiónico mediante PFB

La producción masiva actual de ácido propiónico está basada en la industria petroquímica. Debido al coste, al impacto medioambiental y a la creciente preferencia de la sociedad por el uso de materiales biológicos se ha comenzado a investigar otras formas de producirlo como a través de fermentaciones anaerobias con Propionilbacterias.

Molécula de ácido propiónico
El ácido propiónico es un ácido carboxílico que puede encontrarse naturalmente y que tiene una gran diversidad de usos en la industria alimentaria, farmacéutica, etc.
Este estudio intenta mejorar la eficiencia de producción de ácido propionico, para ello se van a estudiar los beneficios de un cultivo inmovilizado utilizando bagazo de caña de azúcar, el cual es un material ecológico y barato.
Empezaremos hablando de que es un  biorreactor, clave en este proceso.
Un biorreactor es un sistema que mantiene un ambiente biológicamente activo en el que se lleva a cabo un proceso químico que involucra organismos o  sustancias bioquímicamente activas derivadas de dichos organismos.

Bagazo de caña de azucar
En el biorreactor se utilizaron dos técnicas: la libre  y la inmovilizada con caña de azúcar. La ventaja de esta última recae en que la inmovilización celular logra aproximar las células así como aumentar la densidad celular y la concentración de metabolitos dentro de las células por ello es un método mucho más eficiente y logra rendimientos muy superiores a los del libre.



Ahora pasaremos a introducir la discusión del experimento y los resultados que se exponen en el artículo.
 Las células inmovilizadas han resultado ser más productivas, se observa una mayor producción de propionato por unidad de tiempo y una menor cantidad de ácidos orgánicos que se desvían de la ruta (acética y succínica). (Primera gráfica: libres; segunda: inmovilizadas). En la gráfica vemos como el ácido propiónico aumenta más (círculos negros) y la biomasa disminuye (círculos blancos), así como los ácidos orgánicos (cuadrados negros y blancos).

Gráfica comparativa entre fermentación libre (izqda) e inmovilizada (dcha)

Se estudia el método de introducir la glucosa y su influencia en la producción de ácido propiónico: de manera intermitente o de manera constante. Ésta última ha resultado ser más beneficiosa y productiva, ya que la intermitente produce alteraciones metabólicas. En la primera gráfica el ácido propiónico no aumenta tanto como en la segunda (puntos negros gordos) y la glucosa (puntos negros pequeños) se introduce de distintas formas: primera, de manera intermitente; y segunda, de manera continua.

Gráfica comparativa entre fermentación discontinua (izqda) y continua (dcha)
Con las condiciones del PFB (Reactor con una cama de plantas) podemos observar un cambio morfológico en las bacterias: crecen de tamaño aumentando el área de superficie específica beneficiando el intercambio de sustancias.
Se midieron las distribuciones de flujo de carbono y se comparó la producción de ácido propiónico  de los dos tipos de fermentación. Vieron que el flujo que daba lugar a moléculas que más tarde dserían precursores de  este ácido era mayor cuando había una fermentación PFB que cuando las células estaban libres. También se comprobó que la biomasa producida en PFB era también mayor. De esto se concluyó que la fermentación con células inmovilizadas en PFB era mucho más factible.
Se analizaron también los nodos de la ruta de síntesis de propiónico, que son el G6P (Glucosa-6-fostato), PEP (FosfoenolPiruvato) y PYR (Piruvato). De ahí se puede observar que:
Ruta metabólica de la bacteria
G6P: Deriva a la ruta de las pentosasfosfato, a rutas de biosíntesis y la glucólisis, que es la que  nos interesa.
PEP: Se transforma en oxalacetato, que da lugar a succínico, y en pirvato.
PYR: El piruvato se transforma en ácidoláctico, ácido ácetico (que no nos interesan)  y en ácido propiónico.


Se vio que en la fermentación PFB, en el nodo (lugar de bifurcación de flujos) de PEP el flujo se veía desviado hacia la formación de piruvato, reduciéndose la formación de succínico. Mientras, en el nodo de PYR esta misma fermentación aumenta el porcentaje de precursores del propiónico. La fermentación continua sugiere que el PFB produce una distribución de los flujos hacia los 3 nodos de síntesis de ácido propiónico.
La cantidad de alimento debe ser moderado para que su exceso no de lugar a cambios ambientales que consecuentemente perturben el balance metabólico. Aún así, el fed-batch constante es más efectivo con PFB inmovilizado que con el intermitente.
A continuación vamos a mostrar la actividad enzimática de ciertas proteinas frente a distintos medios y a distintas condiciones:

Gráfica comparativa de la actividad de las enzimas G6PDH y PPC

La G6PDH y la PPC aumentan su actividad con la fermentación PFB en comparación con las células libres , lo que se traduce en un aumento de la ruta de las pentosas fosfato y la transformación de PEP a OACE.

Gráfica comparativa de la actividad de las enzimas PTA y ACK

La PTA y ACK disminuyen su actividad con PFB con respecto a las células libres. Son enzimas que desvían el flujo hacia productos que nos son PA. Nos interesa esta disminución de actividad porque se desvía la mínima cantidad de carbono hacia productos que no sean PA.

Gráfica comparativa de la actividad de las enzimas OTC y CoAT. Aumento de la actividad en PFB.


La OTC y la CoAT aumentan su actividad en PFB en comparación con las células libres, que se traduce en cada caso en un aumento de producción de:
                        -OTC: aumento formación de PPCoA precursor de PA
                        -CoAT: realiza la transformación de PPCoA en PA

Se concluyó que:

Mediante PFB se ha obtenido la concentración máxima con diferencia de ácido propiónico por métodos biológicos hasta la fecha,  frente a otros métodos como la fermentación con células libres o el lecho de algodón, en FBB[i] y en  MFB[ii]. También se ha observado un cambio morfológico notable tras la domesticación en PFB. Además el estudio de los flujos metabólicos muestran una redistribución del flujo metabólico hacia la producción de a. propionico sin modificación genética.
En definitiva el reactor PFB ha demostrado ser un método sencillo y barato de aumentar la eficiencia de la producción de a. propiónico.

Referencias:

Autores: Fei Chena, Xiaohai Fenga, Hong Xua, Dan Zhanga, Pingkai Ouyang.

Integrantes del Grupo 7:

Alicia García 
Natalia González 
Melisa Pinilla
Joaquín Rives 
María Romo

jueves, 7 de junio de 2012

Adaptación de las bacterias lácticas al Butanol

ADAPTACIONES LÁCTICAS AL BUTANOL

Autores del trabajo:           
Ramón Quiles, Alfredo López, Isaac García, Rocío González, Javier Rivera.

INTRODUCCIÓN:

Debido a un suministro limitado y al aumento de la carga medioambiental dentro de la sociedad actual. La producción de combustibles a partir de materias primas renovables se ha convertido en un tema de prioridad mundial.
El Butanol ha sido reconocido como un buen candidato para cubrir este puesto, siendo un biocombustible superior, que producen algunos organismos como parte de su metabolismo y en un tiempo prudencialmente corto.
El butanol se produce, junto con acetona y etanol, por fermentación anaeróbica en el caso de bacterias Gram-positivas (particularmente especies del género Clostridium), dicha fermentación puede realizarse a partir de diferentes materias primas de origen agrícola.
Aún hoy existen diversas barreras que reducen la rentabilidad de la producción de Butanol, entre ellas encontramos la baja eficiencia fermentativa con materias primas baratas y alto grado de toxicidad del butanol para las colonias productoras del mismo. Por lo tanto, y a pesar de que necesitamos de una alta tasa de producción de butanol para rentabilizar el sistema, a mayor producción de butanol, menor desarrollo de las colonias productoras y un posterior decrecimiento de la misma producción. 
La tolerancia en las cepas microbianas empleadas no superaba el 2% de concentración de Butanol en el medio, cuando es necesaria una concentración algo mayor para comenzar a rentabilizar la producción del mismo. Esto ha llevado a varios investigadores a trabajar y estudiar otros organismos y encontrar uno que sea más tolerante que los hasta ahora empleados.


ESTUDIO

El objetivo del presente estudio fue evaluar la tolerancia a distintas concentraciones de butanol en el medio de una colección de bacterias lácticas aisladas de plantas de producción de etanol. Además, estas cepas fueron sometidas a una creciente concentración de butanol en los medios de cultivo para mejorar su tolerancia a esta sustancia. Aquí presentamos estos estudios para obtener y aislar cepas tolerantes al butanol.
1: Material y métodos 
    • .  Se extrajeron diversas muestras de colonias bacterianas procedentes de plantas productoras de etanol.
1.2 . Para la identificación del fenotipo de interés (resistencia a concentraciones mayores de Butanol) se emplearon una serie de pruebas de origen comercial, y se comenzaron a aislar las diferentes colonias seleccionadas.

1.3 . Se llevó a cabo un proceso de adaptación-aclimatación muy lento bajo estrictas condiciones anaerobias. Los cultivos bacterianos fueron inoculados en la SRA. complementado con un 2%, 3% y 4% butanol y se incubaron a 37ºC en condiciones anaeróbicas. El crecimiento fue supervisado midiendo  la densidad óptica de cada cultivo. Los cultivos fueron transferidos al cultivo con un 2% y una vez que los cultivos demostraron crecimiento con un solo nivel de concentración de butanol (unos 68 cultivos), se comenzó el cambio a cultivos con un 3%. Después de 20 aclimataciones, los cultivos seleccionados fueron inoculados en la SRA. con 3 %butanol (prueba que solo pasaron 18 cultivos)… Y así hasta llegar al 4% de concentración.

1.4 . Las colonias más aptas para crecer en una concentración del 4% de butanol en el medio (unas 10) fueron seleccionadas y crecidas en un cultivo con esa concentración. Estos cultivos se mantuvieron con éxito durante una semana. Se realizaron 3 repeticiones y se pasó a analizar los resultados.

Análisis de Resultados

Una vez obtenidas las 10 cepas que superaron la prueba con el 4% de concentración en butanol, tuvieron que aplicar diversos métodos para averiguar a que especie pertenecían. Estos métodos fueron:
  • El API 50 CH  que consta de 50 pocillos con una parte aerobia para la oxidación y/o asimilación de compuestos y otra anaerobia para la fermentación. A estos pocillos se les añaden  las bacterias a identificar y  diversos compuestos como azúcares en distintas proporciones (según el numero del pocillo). Dependiendo que compuestos finales se obtengan y que rutas metabólicas se utilicen, los cambios en el Ph, etc,  se puede identificar al microorganismo en cuestión.  





El otro método consiste en secuenciar un trozo del adn ribosomal de la bacteria para así poder asociarla a una especie en concreto.





Los organismos fueron identificados:
Los cultivos más tolerantes fueron el NE L 0206-31 y NE-L 0206-47 fueron identificadas por la API 50 CHL como pediococcus pediococcus parvulus y Lactobacillus crispatus, respectivamente. Los otros 8 aislamientos fueron identificados por 16 rDNA sequencing: NE-L 0206-19 fue identificada como Lactobacillus amylovorus, BR0216-18 como Weissella confused, y los seis cultivos restantes BR0605-3, BR0605-B15, BR0713-18, BR0713-20, BR0713-30, y BR0713-33 se identificaron como Lactobacillus mucosa.
Sólo cambiando las condiciones anaerobias pudimos identificar variedades tolerantes a altas concentraciones de Butanol. El hecho de que los rasgos tolerantes se encontraron en especies de lactobacilos sugirió que las variedades tolerantes pueden poseer las vías concretas para compensar el estrés generado por el butanol o singulares membranas/paredes celulares para proteger las estructuras de daño celular causado por el butanol. También es posible que determinadas señales se activen debido al estrés generado por la acción del butanol producioendo que la proteínas se coordinen para conferir cierta tolerancia al butanol.
¿Porqué eran más aptos estos organismos para soportar mayores concentraciones de Butanol?

Para comprobar si esta tolerancia se debía a una tolerancia determinada por sus genes o por otras razones, se escogieron las 5 cepas más tolerantes, tal y como las colectaron de las productoras de etanol y en un medio de cultivo se les inoculó un 4% de Butanol directamente.
Solo dos cepas soportaron este cambio obteniendo crecimiento a lo largo de 7 días, se trataba de dos cepas de Lactobacillus mucosae. Se obtuvo un crecimiento muy lento, pero a pesar de todo, apreciable, frente al resto de cepas, que tras 7 días no presentaron crecimiento alguno.
Durante este estudio de tolerancia se vio que el resto de cepas, con una adaptación más lenta, eran capaces de soportar esta concentración por una serie de mecanismos diversos, entre ellos un cambio en la composición de los ácidos grasos de membrana (con un consiguiente aumento de su fluidez). Era necesario conocer estos mecanismos para poder identificar los genes responsables de esta tolerancia a altas concentraciones de butanol y poder crear, por ingeniería genética microorganismos productores-tolerantes de Butanol. La idea era obtener Lactobacillum mucosae capaces de producir butanol, para conseguir un organismo que rentabilizase la producción de dicho combustible.




Fig. 1. Prueba de corto plazo el estrés butanol. Las cepas seleccionadas de las cepas originales de las plantas de etanol NE-L0206-19 (amylovorus Lactobacillus), BR0216-18 (Weis-turca confusa) y BR0315-B4 (Lactobacillus johnsonii) y BR0713-30 (mucosa Lactobacillus) , y BR0713-33 (mucosas Lactobacillus) se sembraron en placas de agar MRS y las colonias individuales se inocularon en caldo MRS suplementado con 4% butanol. Los cultivos se mantuvieron durante una semana y OD600 valores fueron graficados contra el tiempo whenOD600 lecturas fueron tomadas en el caldo de cultivo mismo. Tres experimentos se llevaron a cabo y los valores medios se presentaron.






VERSIÓN GRUPO ARA
ADAPTATIONS TO BUTANOL LÁCTIC
Authors of work: Ramón Quiles, Alfredo López, Isaac García, Rocío González, Javier Rivera.
Introduction:
Due to limited supply and increasing the environmental burden in the society. The production of fuels from renewable raw materials has become a priority issue worldwide.
Butanol has been recognized as a good candidate to fill this position, being a superior biofuel, produced by some organisms as part of their metabolism and in a short time prudently. The butanol is produced, along with acetone and ethanol by anaerobic fermentation in the case of Gram-positive bacteria (especially species of the genus Clostridium), said fermentation can be made from different raw materials of agricultural origin.
Even today there are several barriers that reduce the profitability of the production of butanol, among them we find the low efficiency with inexpensive raw materials fermentation and high toxicity of butanol for producing colonies of the same. Therefore, despite that need a high rate of production of butanol to recoup the system, increased production of butanol, lower development of the colonies producing and a subsequent decrease in the same production. Tolerance in microbial strains used did not exceed 2% concentration of butanol in the middle, when you need a somewhat higher concentration to start the production of it profitable. This has led some researchers to work and study other organizations and find one that is more tolerant than the hitherto employed.
STUDY

The aim of this study was to evaluate the tolerance to different concentrations of butanol in the middle of a collection of lactic acid bacteria isolated from ethanol production plants. Furthermore, these strains were subjected to an increasing concentration of butanol in the culture media for tolerance to it. We present these studies to obtain and isolate butanol tolerant strains.

1: Material and methods

1.1. Samples were extracted several bacterial colonies from ethanol-producing plants.

1.2. To identify the phenotype of interest (resistance to higher concentrations of butanol) were used a series of tests of commercial origin, and began to isolate the different colonies selected.

1.3. He took out a process of slow adaptation, acclimatization under strict anaerobic conditions. Bacterial cultures were inoculated in MRS. supplemented with 2%, 3% and 4% butanol and incubated at 37 ° C under anaerobic conditions. Growth was monitored by measuring the optical density of each culture. The cultures were transferred to culture with 2% and once with growth cultures showed a single level of concentration of butanol (about 68 cultures), began to change crops with 3%. After 20 acclimatizations, selected cultivars were inoculated in MRS. with 3% butanol (test only took 18 crops) ... And so on up to 4% concentration.

1.4. Colonies more apt to grow at a concentration of 4% of butanol in the medium (about 10) were selected and grown in culture with this concentration. These cultures were successfully maintained for one week. There were 3 replications and went on to analyze the results.
ANALYSIS OF RESULTS

After obtaining the 10 stocks that passed the test with 4% butanol concentration had to use various means to find out which species they belonged. 
These methods were:       

• The API 50 CH consisting of 50 wells with an aerobic part for oxidation and / or assimilation of compounds and other anaerobic for fermentation. These wells are added to identify bacteria and various compounds such as sugars in various proportions (based on the number of wells). Depending on which final compounds are obtained and that metabolic pathways are used, changes in pH, etc., can identify the organism in question.







• The other method is to sequence a piece of the ribosomal DNA of the bacteria in order to associate a particular species.





The organisms were identified:
The cultures were more tolerant NE and NE-L 0206-31 L 0206-47 were identified by the API 50 CHL as Pediococcus Pediococcus parvulus and Lactobacillus crispatus, respectively. The other 8 isolates were identified by 16 rDNA sequencing: NE-L 0206-19 was identified as Lactobacillus amylovorus, BR0216-18 as Weissella confused, and the six remaining crops-3 BR0605, BR0605-B15-18 BR0713, BR0713-20 , BR0713-30, and BR0713-33 were identified as Lactobacillus mucosa.Only by changing the anaerobic conditions we could identify varieties tolerant to high concentrations of butanol. The fact that the tolerant features were found in species of lactobacilli tolerant varieties suggested that may possess the specific means for compensating the stress generated by the butanol or unique membranes / cell walls to protect the structures of cellular damage caused by butanol. It is also possible that certain signals are activated due to stress generated by the action of butanol producioendo that the proteins are coordinated to confer some tolerance to butanol.


Why these organisms were more apt to withstand higher concentrations of butanol?

To check whether this tolerance was determined by a tolerance genes or for other reasons, the 5 strains were chosen more tolerant as those collected from the ethanol and producing in a culture medium were inoculated with 4% butanol directly. Only two strains endured this change getting growth over 7 days, there were two strains of Lactobacillus mucosae. It was a very slow growth, but nevertheless significant, compared to other strains, after 7 days did not grow at all. During this tolerance study was that the remaining strains, with a slower adaptation, were able to withstand this concentration for a number of different mechanisms, including a change in composition of fatty acids from membrane (with a consequent increase of fluency). It was necessary to understand these mechanisms to identify the genes responsible for this tolerance to high concentrations of butanol and to create genetically engineered microorganisms producing butanol-tolerant.







Figure 1. Short-term test butanol stress. Selected strains of the original strains of ethanol plants NE-L0206-19 (Lactobacillus amylovorus), BR0216-18 (Weis-Turkish confusing) and BR0315-B4 (Lactobacillus johnsonii) and BR0713-30 (Lactobacillus mucosa), and BR0713 -33 (mucous Lactobacillus) were plated onto MRS agar and individual colonies were inoculated in MRS broth supplemented with 4% butanol. Cultures were maintained for a week and OD600 values ​​were plotted against time whenOD600 readings were taken at the same broth. Three experiments were conducted and mean values ​​were presented.


domingo, 3 de junio de 2012

Bacteriocinas en el queso


PRODUCTORES DE BACTERIOCINAS EN QUESO

Durante los últimos años, el consumidor se ha vuelto más exigente en cuanto a calidad y expectativas de un producto saludable y fresco. Para satisfacer al consumidor es necesario investigar y encontrar opciones que permitan obtener alimentos que ofrezcan características interesantes renunciando al uso de algunos conservantes artificiales que puedan estar cada vez más rechazados y favoreciendo el uso de sustitutos que sean capaces de mantener el alimento en buenas condiciones y sean aptos para el consumo.

 En ésto se basa el estudio realizado por los autores del artículo Bacteriocins produced by wild Lactococcus lactis strains isolated from traditional, starter-free cheeses made of raw milk, orientado a la identificación de bacterias productoras de bacteriocinas con el fin de inhibir una amplia gama de microrganismos, incluídos microorganismos patógenos, lo que ha abierto un nuevo campo de investigación para tratar a pacientes con cepas resistentes a los antibióticos ya existentes, y algunos causantes del deterioro de los alimentos.

Para ello intentaron determinar qué cepas son productoras de bacteriocinas, bajo qué condiciones, y de qué bacteriocinas en concreto. Además de identificar los genes implicados en la formación de estos compuestos.

El procedimiento experimental seguido por los investigadores fue el que sigue:

1.                  Identificación y clasificación de aislamientos de Lactococcus Lactis:

Se aislaron 306 muestras de cinco distintos quesos tradicionales españoles (Casín, Cabrales, Genestoso, Peñamellera y Valle del Narcea). Mediante REP y RAPD se identificaron 60 cepas distintas, cada una de ellas con una huella dactilar característica. A partir de estas cepas se identificaron diferentes subespecies de L. lactis, lactis y cremoris mediante ARDRA.




2.                  Actividad antimicrobiana de cepas de L. lactis:

Tras haber identificado los tipos de microorganismos presentes en los aislamientos se procedió a identificar aquellas cepas que tuvieran actividad antimicrobiana poniéndolas en contacto con bacterias indicadoras primero se realizó un agar spot test para ver qué bacterias indicadoras eran inhibidas por qué cepas de los aislamientos obtenidos de los quesos.

Para asegurar que esta información obtenida fuese correcta se realiza un well-difussion assay mediante el cual se obtuvo que el número de cepas que daban un resultado positivo para la actividad antimicrobiana se redujo a 17 cepas.


3.                  Identificación de los genes que codifican bacteriocinas por PCR:

Para poder determinar en qué cepas estaban los genes productores de bacteriocinas, y cuales eran producidas por cada cepa, se diseñaron cebadores complementarios a los genes que codifican para nisina, lacticinas y lactococcinas, y mediante PCR se amplificaron las secuencias del genoma de cada cepa que complementaba con dichos cebadores. Posteriormente se sometieron a electroforesis para determinar, según el tamaño de cada banda, qué bacteriocina codificaba cada cepa.








4.                  Producción de bacteriocina en medio industrial y en laboratorio:

Más tarde se pasó a cuantificar la actividad inhibitoria de la nisina, comparando la de la obtenida en el laboratorio, con la comercial y también en distintos medios.
Además del descubrimiento de bacterias nuevas, también es importante para identificar cepas productoras de cantidades mas altas de antimicrobianos (particularmente los de amplio espectro) para su aplicación comercial.

En conclusión, en este experimento se descubrieron 17 productores de bacteriocinas de las 60 cepas estudiadas, 11 de los cuales producen nisina, 5 lactococcina 972 y 1 lactococcina G.

Referencia bibliográfica:
Bacteriocins produced by wild Lactococcus lactis strains isolated from traditional, starter-free cheeses made of raw milk 
International Journal of Food Microbiology

  • Ángel Alegría, 
  • Susana Delgado, 
  • Clara Roces, 
  • Belén López, 
  • Baltasar Mayo

Realizado por:
Jose Miguel Crespo; Julieta G. Hamzé; Álvaro Herrero; Lara Romo